Please use this identifier to cite or link to this item: https://repositorio.accefyn.org.co/handle/001/1107 Cómo citar
Full metadata record
DC FieldValueLanguage
dc.contributor.authorCoy Rodríguez, Vivian A.-
dc.contributor.authorVargas Osorio, Lily J.-
dc.contributor.authorVarón López, Maryeimy-
dc.contributor.authorLópez Cardona, Nathali-
dc.date.accessioned2021-12-09T21:09:57Z-
dc.date.available2021-12-09T21:09:57Z-
dc.date.issued2018-12-26-
dc.identifier.urihttps://repositorio.accefyn.org.co/handle/001/1107-
dc.description.abstractLa melina (Gmelina arborea Roxb) es una especie de amplia distribución mundial y de elevado valor comercial por su crecimiento rápido y las excelentes propiedades físicas y mecánicas de su madera; sin embargo, constantemente se ve amenazada por diversos factores físicos, químicos y biológicos, siendo los hongos y las bacterias los microorganismos que más pueden afectar su producción. El presente estudio tuvo como objetivo aislar e identificar hongos y bacterias asociados con fustes enfermos de G. arborea en plantaciones ubicadas en el departamento del Tolima (Colombia). La caracterización morfológica de las colonias fúngicas se realizó en el medio Papa-Dextrosa-Agar (PDA) con posterior identificación microscópica, después de inducir la producción de las estructuras reproductivas. El aislamiento de las bacterias se realizó en Agar Nutritivo (AN), con posterior caracterización bioquímica. La identificación molecular fue realizada mediante la amplificación de la región ITS para hongos y 16S para bacterias. Se identificaron los hongos Lasiodiplodia theobromae, Coniothyrium aleuritis, Curvularia geniculata, Chaetomium globosum, Phomopsis columnaris, Diaporthe sp y un aislamiento perteneciente a la clase Dothideomycetes. Las bacterias correspondieron a Bacillus cereus, Pseudomonas alcaligenes y Pantoea dispersa. Mediante pruebas de patogenicidad se determinó que los microorganismos causantes de la pudrición del tejido vascular en fustes jóvenes de melina fueron L. theobromae y C. geniculata.spa
dc.description.abstractGmelina (Gmelina arborea Roxb) is a species of global distribution with a high commercial value due to its rapid growth and excellent physical, chemical, and biological features. Fungi and bacteria are the most important microorganisms that can affect its production. The present study aimed at isolating and identifying fungi and bacteria associated with G. arborea stem diseases in plantations located in the department of Tolima (Colombia). The morphological characterization of the fungal colonies was carried out in Potato Dextrose Agar medium (PDA) with subsequent microscopic identification after inducing the reproductive structures. Bacteria isolation was conducted in nutrient agar with subsequent biochemical characterization. The molecular identification was made by the amplification of the ITS region for fungi and the 16S for bacteria. We identified the fungi Lasiodiplodia theobromae, Coniothyrium aleuritis, Curvularia geniculata, Chaetomium globosum, Phomopsis columnaris, Diaporthe sp, as well as an isolate belonging to the Dothideomycetes class. The bacteria corresponded to Bacillus cereus, Pseudomonas alcaligenes, and Pantoea dispersa. The pathogenicity tests determined that L. theobromae and C. geniculate caused rot of vascular tissue in young candahar stems.eng
dc.format.mimetypeapplication/pdfspa
dc.language.isospaspa
dc.publisherAcademia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturalesspa
dc.rightsCreative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 Internationalspa
dc.rights.urihttps://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/spa
dc.sourceRevista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturalesspa
dc.titleIdentificación de hongos y bacterias asociados a fustes de melina (Gmelina arborea Roxb.) en el departamento del Tolima, Colombiaspa
dc.typeArtículo de revistaspa
dcterms.audiencedepartamento del Tolima, Colombiaspa
dcterms.referencesAgrios, G. N. (2005). Plant Pathology. United States of America: Department of Plant Pathology, University of Florida. p. 251-262.spa
dcterms.referencesAlama, I., Maldonado, E., Rodríguez-Galvez, E. (2006).Lasiodiplodia theobromae affect the cultivation of Palto (Persea americana) under the conditions of Piura, Perú. Universalia. 11: 4-13spa
dcterms.referencesÁlvarez, E., Patermina, J., Espitia, M., Campo, R., Urango, N. (2012). Identificación de hongos asociados a semillas de Acacia mangium Willd., Tectona grandis L.f, y Gmelina arborea Roxb. Fitopatol Colomb. 36: 1-5spa
dcterms.referencesAlves, A., Crous, P., Correia, A., Phillips, A. (2008). Morpho-logical and molecular data reveal cryptic speciation in Lasiodiplodia theobromae. Fungal Divers. 28: 1-13spa
dcterms.referencesAmaíz, L., Vargas, R., Medina, L., Izzeddin, N., Valbuena, O.(2015). Evaluación del efecto antagonista de un consorcio bacteriano sobre Rhizoctonia solani Kühn en cultivos de arroz. RELBAA. 6: 19-30.spa
dcterms.referencesAnuagasi, C. L., Onuorah, J. A., Okigbo, R. N. (2017). Fungal pathogens affecting seedlings of Gmelina arborea Roxb and Tectona grandis Lf and effect of three plant extracts. IJAT. 13: 307-330.spa
dcterms.referencesArguedas, M. (2004). Problemas fitosanitarios en melina (Gmelina arborea (Roxb)) en Costa Rica. Revista Forestal Meso-americana Kurú. 1: 1-9spa
dcterms.referencesAtlas, R. M. (2005). Handbook of media for environmental microbiology. United States of America: CRC press. p. 672spa
dcterms.referencesBalu, A., Rajarishi, R., Thangapandian, K., Senthilkumar, P., Murugesan, S. (2015). Management of important insect pests of Gmelina arborea under agroforestry sys-tem. Advances in Tree Seed Science and Silviculture. 36: 361-378spa
dcterms.referencesBarnett, H.L. & Hunter, B.B. (1998). Illustrated Genera of Imperfect Fungi. Paul, USA: APS Press. p. 218.spa
dcterms.referencesBarrios, A., López, A., Nieto, V., Burgos, N., Yaya, M., González, I. (2011). Efecto del control de malezas y ferti-lización sobre el crecimiento inicial de Gmelina arboreaRoxb. en el departamento del Tolima,Colombia. Colombia Forestal. 14: 3.spa
dcterms.referencesCai, L., Udayanga, D., Manamgoda, D. S., Maharachchikumbura, S. S. N., Mckenzie, E. H. C., Dong Guo, L., Hyde, K. D. (2011). The need to carry out re-inventory of plant pathogenic fungi. Tropical Plant Pathol. 36: 205-213spa
dcterms.referencesCardona, C. S., Marín Montoya, M., Díez, M. C. (2012). Identi-ficación del agente causal de la pudrición basal del tallo de vainilla en cultivos bajo cobertizos en Colombia. Rev Mex Mic. 35: 23-34spa
dcterms.referencesChavarriaga, D. (2011). Protección Fitosanitaria Forestal. Bogotá, Colombia: Instituto Colombiano Agropecuario. p. 226.spa
dcterms.referencesCibrián, D., García, S., Macias, B. (2008). Identificación y manejo de plagas y enfermedades en viveros forestales. Jalisco, México: Forestal CN. p. 144.spa
dcterms.referencesCortés, R. (2011). Manual de prácticas de fitopatología. Ciudad Juárez, Chihuahua: Universidad Autónoma de Ciudad Juárez. p. 81spa
dcterms.referencesDel Río, L. E., Castaño-Zapata, J. (1994). Estado actual de la investigación sobre pudrición de mazorcas de maíz provocada por Stenocarpella sp. Centroamérica. Ceiba. 34:211-228.spa
dcterms.referencesDutta, S., Rani, T. S., Podile, A. R. (2013). Root exudate-induced alterations in Bacillus cereus cell wall contribute to root colonization and plant growth promotion. PloS one. 8: 1-12spa
dcterms.referencesEscalona, Y. & Contreras, N. (2011). Primer reporte de la mancha bacteriana en parchita (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa) en Venezuela. Bioagro. 23: 69-75.spa
dcterms.referencesEspitia, M., Murillo, O., Castillo, C. (2016). Ganancia genética esperada en melina (Gmelina arborea Roxb.) en Córdoba (Colombia). Temas Agrarios. 20: 45-59spa
dcterms.referencesFrench, E. & Hebert, T. (1980). Métodos de investigación fito-patológica. San José, Costa Rica: Instituto Interamericano de Ciencias Agrícolas. p. 142-186.spa
dcterms.referencesGao, L., Wang, Y., Li, Z., Zhang, H., Ye, J., Li, G. (2016). Gene expression changes during the gummosis development of peach shoots in response to Lasiodiplodia theobromaeinfection using RNA-Seq. Front Physiol. 7: 170spa
dcterms.referencesGarcía-González, T., Sáenz-Hidalgo, H. K., Silva-Rojas, H. V., Morales-Nieto, C., Vancheva, T., Koebnik, R., Ávila-Quezada, G. D. (2018). Enterobacter cloacae, an emerging plant-pathogenic bacterium affecting chili pepper seedlings. Plant Pathol J, 34: 1.spa
dcterms.referencesGezahgne, A., Cortinas, M. N., Wingfield, M. J., Roux, J. (2005). Characterisation of the Coniothyrium stem canker patho-gen on Eucalyptus camaldulensis in Ethiopia. Australas Plant Pathol. 34: 85-90.spa
dcterms.referencesGlienke-Blanco, C., Aguilar-Vildoso, C., Viera, M. L., Barroso, P. A., Acevedo, J. (2002). Genetic variability in the endo-phytic fungus Guignardia citricarpa isoleted from citrus plants. Genet Mol Biol. 25: 251-255.spa
dcterms.referencesGuillermo-Ramírez, J. (2017). Desarrollo en etapa de vivero de Gmelina arborea Roxb. ex Sm sometida a tres dosis de fertilización y dos sustratos. Cultivos Tropicales. 38: 47-52spa
dcterms.referencesHalfeld-Vieira, B., Mourão, M., Tonini, H., Nechet, K. (2006). Heartrot in homogeneous stands of Acacia mangium. Pesqui Agropecu Brasil. 41: 709-711spa
dcterms.referencesHanlin, R.T. (1990). Illustrated genera of Ascomycetes. Minnesota, USA: APS Press. p. 263spa
dcterms.referencesHodges, C. S., Reis, M. S., Henfling, J. D. (1976). A cancro do Eucalipto causado por Diaporthe cubensis. Fitopatol Bras.1: 129-170.spa
dcterms.referencesHung, P. M., Wattanachai, P., Kasem, S., Poeaim, S. (2015). Efficacy of Chaetomium species as biological control agents against Phytophthora nicotianae Root Rot in citrus. Mycobiology. 43: 288-296spa
dcterms.referencesIsmail, A. M., Cirvilleri, G., Polizzi, G., Crous, P. W., Groenewald, J. Z., Lombard, L. (2012). Lasiodiplodia species associ-ated with dieback disease of mango (Mangifera indica) in Egypt. Australas. Pl. Pathol. 41: 649-660.spa
dcterms.referencesJuárez-Palacios, J. C., Honorato-Salazar, A., Vázquez-Silva, L., Parraguirre-Lezama, C. (2013). Patogenicidad de Chrysoporthe cubensis en clones de Eucalyptus grandis y E. urophylla en el sureste de México. Madera y Bosques. 19: 22-29.spa
dcterms.referencesKiraly, Z., Klement, Z., Solymosy, F., Voros, J. (1970). Methods in plant pathology with special reference to breeding for disease resistance. Budapest, Hungría: Academica Kiado. p. 509.spa
dcterms.referencesKoch, R. (1876). The etiology of anthrax, based on the life history of Bacillus anthracis. Beiträge zur Biologie der Pflanzen.2: 277-308spa
dcterms.referencesLópez-Cardona, N. & Castaño-Zapata, J. Etiología de la muerte descendente del tomate de árbol [Solanum betaceum (cav.) sendt.]. Revista de Agronomía. 21: 7-18spa
dcterms.referencesMariño, Y. & Rodríguez, M. (2010). El punto de marchitez permanente (PMP) en melina (Gmelina arborea L. Roxb) para la costa Caribe colombiana ¿una característica para la selección de clones? Corpoica. Ciencia y Tecnología Agropecuaria. 11: 117-118spa
dcterms.referencesMelo, O. A. (2015). Modelación del crecimiento, acumulación de biomasa y captura de carbono en árboles de Gmelina arborea Roxb., asociados a sistemas agroforestales y plantaciones homogéneas en Colombia (Tesis Doctoral), Universidad Nacional de Colombia, Medellínspa
dcterms.referencesMestizo, Y., Bandera, G., Aya, H., Greicy, S., Varon, F., Navia, M., Marinez, G. (2012). Caracterización de síntomas e identificación de microorganismos en palmas de aceite afectadas por la pudrición basal del estípite. Revista Palmas. 33: 13-27.spa
dcterms.referencesMohali, S., Encinas, O., Mora, N. (2002). Manchado azul en madera de Pinus oocarpa y Azadirachta indica en Venezuela. Fitopatología Venezolana. 15: 30-32spa
dcterms.referencesMurillo-Gamboa, O., Salas-Rodríguez, A., Murillo-Cruz, R., Ávila-Arias, C. (2016). Tasa de avance de la pudrición del tronco en melina Gmelina arborea Roxb. y posibilidades de manejo. Revista Forestal Mesoamericana Kurú. 13: 40-50spa
dcterms.referencesObregón, C. (2006). Gmelina arborea, versatilidad, renovación y productividad sostenible para el futuro. Revista el mueble y la madera. 50: 14-20.spa
dcterms.referencesPark, J. H., Choi, G. J., Jang, K. S., Lim, H. K., Kim, H. T., Cho, K. Y., Kim, J. C. (2005). Antifungal activity against plant pathogenic fungi of chaetoviridins isolated from Chaeto-mium globosum. FEMS Microbiol Lett. 252: 309-313.spa
dcterms.referencesPérez-Vera, O. A., Yánez-Morales, M. D., Alvarado-Rosales, D., Cibrian-Tovar, D., García-Díaz, S. E. (2005). Fungi associated to Eucalyptus, Eucalyptus grandis hill: Maid. Agrociencia. 39: 311-318.spa
dcterms.referencesRives, N., Acebo, Y., Hernández, A. (2007). Bacterias promotoras del crecimiento vegetal en el cultivo del arroz (Oryza sativaL.). Perspectivas de su uso en Cuba. Cultivos Tropicales. 28: 29-38spa
dcterms.referencesRoux, J., Coutinho, T., Mujuni, D., Wingfield, M. (2001). Diseases of plantation Eucalyptus in Uganda. S Afr of Sci. 97: 16-19spa
dcterms.referencesSalas-Rodríguez, A., Murillo-Gamboa, O., Murillo-Cruz, R., Ávila-Arias, C. (2016). Evidencia de tolerancia genética a la pudrición del tronco en clones de Gmelina arboreaRoxb. en Costa Rica. Revista Forestal Mesoamericana Kurú. 13: 30-39spa
dcterms.referencesSandoval-Sánchez, M., Nieto-Ángel, D., Sandoval-Islas, S. T.-O., Orozco-Santos, M., Silva-Rojas. (2013). Hongos aso-ciados a pudrición del pedúnculo y muerte descendente del mango (Mangifera indica L.). Agrociencia. 47: 61-73.spa
dcterms.referencesSelvakumar, G., Kundu, S., Joshi, P., Nazim, S., Gupta, A. D., Mishra, P. K., Gupta, H. S. (2008). Characterization of a cold-tolerant plant growth-promoting bacterium Pantoea dispersa 1A isolated from a sub-alpine soil in the North Western Indian Himalayas. World J of Microbiol and Biotechnol. 24: 955-960spa
dcterms.referencesSchaad, J. (2001). Laboratory Guide for Identification of Plant Pathogenic Bacteria. Paul, United States of America: The American Phytopathological Society. p. 373spa
dcterms.referencesShanthiyaa, V., Saravanakumar, D., Rajendran, L., Karthikeyan, G., Prabakar, K., Raguchander, T. (2013). Use of Chaeto-mium globosum for biocontrol of potato late blight disease. Crop Protection. 52: 33-38.spa
dcterms.referencesTejera-Hernández, B., Rojas-Badía, M. M., Heydrich-Pérez, M. ( 2011). Potencialidades del género Bacillus en la pro-moción del crecimiento vegetal y el control biológico de hongos fitopatógenos. Revista CENIC. 42: 131-138spa
dcterms.referencesUmana, E. J., Akwaji, P. I., Markson, A. A., Udo, S. E. (2015). Gmelina arborea Roxb: Associated mycoflora and dis-eases in Cross River State, Nigeria. Global J Sci Front Res. 15: 1-11.spa
dcterms.referencesValdés, J. (2014). Identificación de patógenos en Prosopis glandulosa en la Región del Sureste del Estado de Coahuila (Tesis de pregrado), Universidad Autónoma Agraria Anto-nio Narro, Méxicospa
dcterms.referencesVergara, A., Mercado, T., Jarma, A., Gatti, K. (2017). Water requirement of Gmelina arborea on nursery stage under controlled conditions. Floresta e Ambiente. 24: 10.spa
dcterms.referencesWingfield, M. J. & Robison, D. J. (2004). Diseases and insect pests of Gmelina arborea: Real threats and real opportu-nities. New forests. 28: 227-243.spa
dcterms.referencesYang, H. J., Cha, Y. J., Kim, H., Choi, S. S. (2016). Antifungal activity of nano and micro charcoal particle polymers against Paecilomyces variotii, Trichoderma virens and Chaetomium globosum. N Biotechnol. 33: 55-60.spa
dcterms.referencesZhang, L., Birch, R. G. (1997). Mechanisms of biocontrol by Pantoea dispersa of sugar cane leaf scald disease caused by Xanthomonas albilineans. Journal of Applied Microbiology. 82: 448-54.spa
dcterms.referencesZhao, W., Bai, J., Mccollum, G., Baldwin, E. (2015). High incidence of preharvest colonization of huanglongbing-symptomatic Citrus sinensis fruit by Lasiodiplodiatheobromae (Diplodia natalensis) and exacerbation of postharvest fruit decay by that fungus. Appli and Environ microbiol. 81: 364-372.spa
dc.rights.accessrightsinfo:eu-repo/semantics/openAccessspa
dc.type.driverinfo:eu-repo/semantics/articlespa
dc.type.versioninfo:eu-repo/semantics/publishedVersionspa
dc.rights.creativecommonsAtribución-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)spa
dc.identifier.doihttps://doi.org/10.18257/raccefyn.771-
dc.subject.proposalEspecies forestalesspa
dc.subject.proposalForest specieseng
dc.subject.proposalITSspa
dc.subject.proposalITSeng
dc.subject.proposal16Sspa
dc.subject.proposal16Seng
dc.subject.proposalPostulados de Kochspa
dc.subject.proposalKoch’s postulateseng
dc.subject.proposalMicroorganismosspa
dc.subject.proposalMicroorganismseng
dc.type.coarhttp://purl.org/coar/resource_type/c_6501spa
dc.relation.ispartofjournalRevista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturalesspa
dc.relation.citationvolume42spa
dc.relation.citationstartpage343spa
dc.relation.citationendpage352spa
dc.publisher.placeBogotá, Colombiaspa
dc.contributor.corporatenameAcademia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturalesspa
dc.coverage.regionDepartamento del Tolima, Colombia-
dc.relation.citationissue165spa
dc.type.contentDataPaperspa
dc.type.redcolhttp://purl.org/redcol/resource_type/ARTspa
oaire.accessrightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2spa
oaire.versionhttp://purl.org/coar/version/c_970fb48d4fbd8a85spa
Appears in Collections:BA. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas Físicas y Naturales

Files in This Item:
File Description SizeFormat 
5. Identificación de hongos y bacterias asociados.pdfCiencias Naturales744.14 kBAdobe PDFThumbnail
View/Open


This item is licensed under a Creative Commons License Creative Commons